光學顯微鏡技術是研究細胞結構zui重要的工具，在細胞生物學領域中應用。近年來，隨著多種現代生物學技術與光鏡技術的結合，使光學顯微鏡展示出更新的活力。目前光學顯微鏡已發展成多種類型，用于各類不同的研究目的。在細胞生物學中常用的有普通光學顯微鏡、熒光顯微鏡、激光共聚焦顯微鏡、相差顯微鏡，以及暗視野顯微鏡和微分干涉差顯微鏡。 
（一）普通光學顯微鏡技術 
普通光學顯微鏡（簡稱光鏡）是zui常使用的顯微鏡，主要由三部分組成：聚光鏡、物鏡和目鏡。光鏡采用可見光作光源，分辨率為0.2µm，放大倍率為1000倍，其他幾種顯微鏡都是在此基礎上發展起來的。 
用于普通光學顯微鏡觀察的生物樣品必須應過一系列的組織處理并制成1～10µm的切片。常規的樣品制備方法是：甲醛固定，酒精脫水，石蠟包埋，切片，蘇木精（hematoxylin）和伊紅（eosin）染色，光鏡觀察。 
普通光學顯微鏡能觀察染色的生物標本的結構，主要是因為光線通過染色標本時其顏色（光波的波長）和亮度（光波的振幅）發生變化，人的眼睛才能觀察到。 
（二）熒光顯微鏡技術 
熒光顯微鏡（fluorescentmicroscope）是以各種特定波長光源激發生物標本中的熒光物質，產生各種可見顏色熒光的一種顯微鏡。熒光顯微鏡一般采用高壓汞燈和弧光燈作為光源，在光源和反光鏡之間放一組濾色片以產生特定波長的激發光，光譜一般從紫外到紅外，從而激發各種熒光物質產生不同波長的發射光。利用熒光顯微鏡可研究熒光物質在組織和細胞內的分布，以達到對細胞的特定物質進行定性、定位和定量觀察的目的。與生物學有關的熒光現象有三種： 
⑴自發熒光通過激發光會使物體發出熒光，如葉綠素、維生素A等。 
⑵誘發熒光通過誘導劑作用而發的熒光，如甲醛蒸氣處理可誘發細胞和組織中生物單胺類產生熒光。 
⑶熒光染料染色熒光例如吖啶橙可以對細胞DNA、RNA同時染色，顯示不同顏色的熒光，DNA呈綠色熒光，RNA呈橙色熒光。熒光染料可和抗體共價鍵結合，這種標記的抗體再和相應的抗原結合形成抗原抗體復合物，經激發后發射熒光進行抗原定位。 
由于熒光顯微鏡技術染色簡便、敏感度高而且圖像色彩鮮明，所以是目前對特異蛋白質等生物大分子定性、定位的有力的工具。 
（三）相差顯微鏡技術 
相差顯微鏡（phasecontrastmicroscope）是一種可以觀察活細胞或未經染色的標本的顯微鏡。相差顯微鏡能夠改變直射光的相位，并且利用光的衍射和干涉現象，把相差變成振幅差（明暗差），同時它還吸收部分直射光線以增大其明暗反差。因此可以觀察活細胞或未經染色的標本。 
相差顯微鏡與普通顯微鏡的主要區別是在物鏡后裝有一塊“相差板”，偏轉的光線分別通過相差板的不同區域，由于相差板上部分區域有吸光物質，所以又使兩組光線之間增加了新的光程差，從而對樣品不同密度造成的相位差起“夸大”作用。zui后這兩組光線經過透鏡又會聚成一束，發生互相疊加或抵消的干涉現象，從而表現出肉眼明顯可見的明暗區別。 
觀察活體細胞常采用倒置相差顯微鏡，它與一般相差顯微鏡的不同是光源和聚光器裝在上方，相差物鏡裝在載物臺下方，便于觀察在培養瓶中貼壁培養的細胞，這樣可清楚地分辨細胞的形態、細胞核、核仁以及胞質中存在的顆粒，甚至研究細胞核、線粒體等細胞器的動態。 
（四）微分干涉差顯微鏡技術 
微分干涉差顯微鏡（differentialinterferencecontrast）又稱Nomarski相差顯微鏡，其優點是能顯示結構的三維立體投影影像。與相差顯微鏡相比，標本可略厚一點，折射率差別更大，故影像的立體感更強。 
微分干涉差顯微鏡利用的是偏振光，這些光經棱鏡折射后分成兩束，在不同時間經過樣品的相鄰部位，然后在經過另一棱鏡將這兩束光匯合，從樣品中厚度上的微小區別就會轉化成明暗區別，增加了樣品反差并且具有很強的立體感。 
微分干涉顯微鏡能使細胞核及較大的細胞器如線粒體等具有較強的立體感，比較適合于顯微操作。目前多用于基因注入、核移植、轉基因動物等生物工程的顯微操作。將微分干涉差顯微鏡接上錄象機，可以觀察活細胞中的顆粒及細胞器的運動。 
（五）激光掃描共焦顯微鏡 
激光掃描共焦顯微鏡（laserscanningconfocalmicroscope，LSCM），也被稱為激光掃描細胞儀（laserscanningcytometer，LSC）。自20世紀70年代問世以來很快得到迅速發展，成為分子細胞生物學的新一代研究工具。激光掃描共焦顯微鏡在顯微鏡基礎上配置激光光源，掃描裝置，共扼聚焦裝置和檢測系統，整套儀器均由計算機自動控制，軟件監控和執行各組件之間的切換。生物醫學應用中LSCM的顯微鏡以倒置顯微鏡為主，便于活細胞檢測。與普通光鏡和熒光顯微鏡相比有一些明顯的優點，其中主要有： 
（1）普通顯微鏡使用的光源為鹵素燈，光譜范圍寬，成象時樣品上每個照光點均 
會受到色差影響以及由照射光引起的散射和衍射的干擾，影響成象質量。LSCM的光源為激光，是單色性好的平行光，基本消色差，成象聚焦后焦深小，縱向分辨率高，可無損傷地對樣品作不同深度的層掃描和熒光強度測量。 
（2）普通熒光顯微鏡分辨率低，顯示的圖象結構為多層面的圖象迭加，結構不夠 
清晰。LSCM結構上采用雙針孔（pinhole）裝置，形成物象共扼的*設計（如圖2－2所示）。激光通過聚光鏡焦平面上針孔形成點光源經物鏡在焦平面上對樣品進行逐點掃描，樣品上每個照射點，反射后經過物鏡折射到像焦平面的探測針孔處成像，經空間濾波后，有效地抑制同焦平面上非測量光點形成的雜散熒光和樣品的不同焦平面發射來的干擾熒光。每個像點被光電倍增管（PMT）或冷電感藕合器件（cCCD）探測器接收。因為光學系統物象共扼，只有物鏡焦平面上的點經針孔空間濾波才能形成光點圖象，掃描后可得到信噪比*的光學橫斷面，分辨率比普通光學顯微鏡提高1.4倍。LSCM能以0.1um的步距沿軸向對細胞進行分層掃描，得到一組光學切片，不同焦平面的光學切片經三維重建后能得到樣品的三維立體結構，這種功能被形象地稱為"顯微CT"。 
（3）LSCM的高靈敏度、高分辨率和高放大倍數，減少了光淬滅的影響，提供了 
普通光學顯微鏡無法顯示的結構信息，并適用于達到毫秒級的快速變化檢測。 
LSCMzui常用的功能是熒光檢測、三維重建和顯微操作等。其中熒光檢測覆蓋的內容極為廣泛，通過多種熒光探針或熒光連接抗體，可對細胞內離子、pH值、各種蛋白質分子進行動態測定。另外利用激光掃描還可以對細胞進行特殊操作，例如光刀切割法（cookie-cutter）作粘附細胞分選（adheredcellsorting），能殺滅不需要的細胞，保留所選細胞亞群繼續培養；激光光陷阱技術（又稱為光鑷技術）對目標細胞進行非接觸式的捕獲和固定，并進行操作；激光作為光子刀可以用來完成細胞膜瞬間打孔以及對線粒體、溶酶體、染色體和神經元突起的切割等顯微細胞外科手術。

顯微鏡銷售楊